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--- danield:olgaonlinejournal [2020-11-12 15:34]
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danield
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 ===2020-11-11===
-- **Vibrio natriens:**  super GVO S1 Keim, ist noch nicht in der internen Stammsammlung, muss bis zum -80°C Freezer überleben. etwa alle 4-6 Wochen Ausstreichen auf LB + 3% NaCl. letzter Ausstrich: 11.11.2020
+- **Vibrio natriens:**  super GVO S1 Keim, ist noch nicht in der internen Stammsammlung, muss bis zum -80°C Freezer überleben. etwa alle 4-6 Wochen Ausstreichen auf LB + 3% NaCl. letzter Ausstrich: 11.11.2020, bei RT gelagert (Parafilm)
-- **Bacillus ssp.:** auf LB Agar lange überleben, noch nicht in internen Stammsammlung, muss bis zum -80°C Freezer überleben. etwa alle 4-8 Wochen Ausstreichen auf LB. letzter Ausstrich: 11.11.2020
+- **Bacillus ssp.:** auf LB Agar lange überleben, noch nicht in internen Stammsammlung, muss bis zum -80°C Freezer überleben. etwa alle 4-8 Wochen Ausstreichen auf LB. letzter Ausstrich: 11.11.2020,
+bei 4°C gelagert (Parafilm)
 - **Harz Exponate:**  mit 'Kunstharz schöne Agarplatten eingießen (zum Herzeigen, Austellungen, usw). Derzeit mit Epoxyharz (2 Komponent) gute Ergebnisse, aber 50% Fail wegen Wasseranteil der Agarplatten. --> besseres Harz bei OBI?
+x roter Stamm - Trocknungsmethode ausprobieren
+- **Agar Art:** LB Platten gegossen. 4 für aktuelle Stämme verwendet. 2 große und 5 kleine Platten übrig zum Zeichnen. Aktuelle Stämme sind orange (40), weiß (8), rot (7) und gelb (14). in den nächsten Tagen J/T/H fragen wegen Illustration zum Zeichnen. Platten für Harz Exponate.
-- **Agar Art:** LB Platten gegossen. 4 für aktuelle Stämme verwendet. 2 große und 5 kleine Platten übrig zum Zeichnen. Aktuelle Stämme sind orange (40), weiß (8), rot (7) und gelb (14). in den nächsten Tagen Jaqcui/Tiana/Helena fragen wegen Illustration zum Zeichnen.
+.12. alle 4 Stämme frisch ausgstrichen.
+zu tun: Bilder anfertigen,  Pinsel besorgen, 3 LB Platten sind da.
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-- **VuVa:** MRS Platten erstellt. 5 kleine für aktuelle Kulturen. 2 große und 11 kleine MRS Platten übrig.  Proben nach Agar Art besorgen. Vorher Wiki Seite machen. darin Seite für Milchsäurebakt. Protokoll neu überdenken und schreiben, einfacher!  Milchsäure Bakterien aus Jogurt holen.
+- **VuVa:**
+MRS Platten erstellt. 5 kleine für aktuelle Kulturen. 2 große und 11 kleine MRS Platten übrig.  Proben nach Agar Art besorgen. Vorher Wiki Seite machen. darin Seite für Milchsäurebakt. Protokoll neu überdenken und schreiben, einfacher!  Milchsäure Bakterien aus Jogurt holen.
 Folgende Proben aktiv: Rotkehlchen 01, Pinguin 01, Kolibri 01-02-03,.
+KAPUTT, neu isolieren.
+Ausgestrichen auf MRS Platten, 37°C, Aerob UND Anaerob --> wer nicht wächst ist kein Milchsäurebakterium. (siehe unten), aber Kontrolle mit anderen Mitteln (Gram Färbung, Biochemisch).
 MRS Medium (30 mL) für ONC zum Glyc Einfrieren mit Perlen.
-Infos aus Wikipedia Lactobacillus:
+**Quelle:** https://frauenarzt-praxis-berlin-mitte.de/gynaekologie/vaginales-mikrobiom/
+**Infos aus Wikipedia Lactobacillus:**
 __Erscheinungsbild bei Milchsäurebakterien:__ Lactobacillus gilt als typische Gattung für ein Milchsäurebakterium.[4] Bei den Vertretern der Gattung handelt es sich um grampositive Bakterien, sie bilden keine Überdauerungsformen wie Endosporen und sind in den meisten Fällen nicht zur aktiven Bewegung fähig. Die Arten von Lactobacillus sind überwiegend stäbchenförmig, die Zellen kommen einzeln oder in Ketten vor.[5] Es können aber auch gekrümmte und schraubenförmige (z. B. Lactobacillus curvatus) Varianten auftreten. Nach der Zuordnung verschiedener Arten, die zunächst in anderen Gattungen klassifiziert wurden, gibt es nun unter den Laktobazillen auch einige Kokken sowie Bakterienformen zwischen Kokken und Stäbchen.[2]
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 Als Vertreter der Milchsäurebakterien bzw. Lactobacillaceae wachsen Lactobacillus-Arten anaerob, aber aerotolerant, d. h., sie wachsen in der Anwesenheit von Luftsauerstoff, benötigen aber keinen Sauerstoff für ihren Stoffwechsel. So auch die vaginalen grampositiven Anaerobier sie sind pleomorph, sie erscheinen als Stäbchen oder Kokken.
-- **Algen:**
+- **Algen:** Kalt-Licht Bildschirm von fgenesis auf den Schüttler 200 rpm.
+mL des Algen Mediums in sterile Eprouvetten. Algen und Wasserproben (Ragnitz), 200 µL in die 5 mL. Start 11.11.2020
+.11.: Positiv Kontrolle, Grüne Algen wachsn an.
+.11.: 5 weitere Kulturen wachsen an.
+.12.: Grünalgen wachsen gut, inkl. Kontrolle 2x Grün.
+x Hyphen artiges Wachstum.
+x punktuell bräunlich, kein eindeutiges Wachstum.
+.12.: Temp Medium, 12 °C, stop Wachstum
+- Zentrifugiert (10 min, 4000 rpm)
+- in Eppi:
+. ursprung grün
+. punkt braun
+. grün super+
+. hyphen
+. braun-gelb
+-diese 5 neu inkubieren in Algen Medium (12.12. - 10.1.)
+- 4.1. gutes Wachstum, alle Algen sind gewachsen, auch 4.
+-1 & 5 in 50 mL Kolben auf Shaker (Stufe 2) mit Kaltlichtbildschirm.
+- 1, 3 & 5 in Eppis bei 4°C (Alge x Dec). 2 & 4 vermischt, NEU machen! 4 war super interessant!
+.2.
+- in 50 mL Kolben, bei etwa 16-18°C geschüttelt.
+-Alge 1 super gut (grün) angewachsn.
+-Alge 5 trüb, weißlich
+- Alge 2 kaputt
+Next step: Mikroskopieren
+- ** Pilze:**
+Pilzstammsammlung angelegt (Stammsammlung).
+Reinkulturen an Schimmelpilze als Glyc Stocks eingefroren.
+in ein 1,5 mL Eppi: ~400 mL sterile Glasperlen mit Loch, 400 mL Glycerol (70%) + 200 mL 0,9 % NaCl-Lsg (Saline) mit Sporen. Eingefroren bei -25°C.
+Test zum Reaktivieren, mit sterilem Zahnstocker 1 Perle auf YPD Agar + 10 mL Saline auf die Perle zum Verteilen/Waschen. Bei Agar Platten bei RT.
+Neu Kultivierung:
+Kontamination bei allen/andere Morphologie.
+neue Stammsammlung, derzeit nu alle bei 4°C.
+-NEU MACHEN! Medium YPD is anders als vorheriges Medium, neue Morphologie!
+- P. stip in großer Flasche kultivieren.

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