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Chemikalien
( XY* = verschließbarer Chemikalienschrank)
A
Aceton, rein* | Agarose | Alginsäure | Ammoniak* | Ammoniakösung* (25%) | Ammoniumacetat | Ammoniumsulfat |
B
Borsäure | Bromthymolblau |
C
Calciumchlorid | Calconcarbonsäure | Chloroform* |
D
D-Glucuronsäure | Diethylether* | Di-Kaliumhydrogenphosphat | Di-Methylaminobenzaldehyd | D-Mannit | DPBS 1x | D-Sorbit |
E
EDTA | Eisessig* | Essigsäure 1M | Essigsäure-N-Butyleser* | Ethylacetat* |
F
Fehling Lösung 1 | Fehling 2 |
G
Gluconsäure | Gylcerin | Glycin |
H
HEPES |
I
Indikatorpuffertabletten | Isopropanol* |
J
Jod-Jod-Kalium |
K
Kaliumacetat | Kaliumdihydrogenphosphat | Kaliumdihydrogenphosphat | Kaliumhydroxid* | Kaliumnitrat* | Kristallviolett | Kupfersulfphat Pentahydrat |
L
L-Cystein | Lugolsche Lösung |
M
Magnesiumcarbonat | Magnesiumchlorid | Methylenblau | Methylorange |
N
Natriumfluorid* | Natriumacetat | Natriumchlorid | Natriumhydrogensulfit Lösung 37°C | Natriumhydroxid* | Natriumnitrit* | Natriumsulfat | Natriumthiosulfat | n-Dodecan* | Nilblau |
O
Orthophosphorsäure 80% |
P
PEG-400 | PEG-8000 | Phenolphtalein | Phosphorsäure conc.* |
R
Reinigungsaceton* | Rotisorb |
S
Safranin | Salpetersäure conc.* | Salzsäure 1M | Salzsäure 33%* | Schwefel, elementar | Schwefelsäure 95%* | SDS* |
T
TRIS | Triton-X |
W
Wasserstoffperoxid 30%* |
Nährmedium (Mikrobiologie)
In Gebinde:
Agar-Agar | Chloramphenicol | Glukose 50% | |
Hefeextrakt | MacConkey-Agar | Malzextrakt | |
Nährbouillon | Pepton | Riboflavin + Zucker | Rindsbrühe bzw. Suppe |
Streptomycinsulfat | TBX-Chromo-Agar | Terrific Broth | |
Trypton | YPD |
“Mission is possible:” Selbst mischbare Medien
LB Medium | LB (Vibrio) | Citrat Medium | Algen Medium |
Hefeextrakt 5 g | LB mit 3% NaCl | Diammoniumsulfat 0,22 g | |
Trypton 10 g | mit ddH20 auf 1 L | Kaliumdihydrogenphosphat 1,824 g | |
NaCl 1-10 g | Magnesiumchlorid 0,158 g | ||
mit ddH20 auf 1 L | Bromthymolblau 80 mg | ||
NaCl 4,806 g | |||
Zitronensäure 1,489 g | |||
NaOH 1,063 g | |||
KOH 41 mg | |||
Ammoniak (25%) 0,407 mL | |||
mit ddH20 auf 1 L |
* für Agar Platten 1,5% Agar Agar zugeben (Volumen ca. 1/3 von Gefäß)
* bei 121°C für mind. 20 min autoklavieren (bei Agar einen Rührknochen vorher hinzu geben)
DNA-/Plasmid Minipräp Kit
inklusive Protokoll
Lösung 1
50 mM Tris/HCl pH=8 | 10 mM EDTA pH=8 | RNAse A 100µg/mL |
Lösung 2
0,2 M NaOH | 1% (w/v) SDS |
Lösung 3
2,8 M KAc, pH=5,1 |
Isopropanol 99%
Ethanol 70 %
Biohacker Box
Agartine (Maltodextrin, 20% Agar Agar) | Aktivkohle | Autoklavierbare Plastikdose (Rama) | |
Eiskugelbeutel | Frischhaltefolie | Glas mit Sand | |
Glucose (Dextropur) | Hefeexktrakt (Trübung) | Kaffeefilter | |
Kristallzucker (Saccharose) | Meersalz | Melasse | |
Milchpulver (Bebevita Folgemilch) | Polenta | Rindsbrühe Suppenpulver | |
Salzstreuer (Glas mit schwarze Deckel) | Soja Pepton | Watte | Zitronensäure |
Kühl- & Gefrierschrank (Lagerung bei 4°bzw. -20°C)
Kühlschrank (4°C):
WAS | WO |
Bakteriophagen (origin. & Lysate) | Tür links oben |
Eurofin Genetics Primer | Tür rechts oben |
Nippon Green Genetics | Tür Antibiotika Stock |
Penecillin 5 mg/mL | Tür Antibiotika Stock |
Proteinase K | Tür Antibiotika Stock |
Ampicillin Natriumsaltz | Tür Antibiotika Stock |
Kanamycinsulfat | Tür Antibiotika Stock |
1,4-Dithiothreit | Tür Antibiotika Stock |
Geneticinsulfat | Tür Antibiotika Stock |
DIY Lysozym | Tür Antibiotika Stock |
diverse Agarplatten Reserve | Tür unten |
Agarplatten mit Mikroorganismen | aufgeteilt im Kühlschrank |
Gefrierfach im Kühlschrank: 3x Kühlelemente (BIOLabs) 1x blaues Kühlelement für Eppis
Gefrierschrank (-20°C):
Fach OBEN
Weiß1 = Bufferbox
NEBuffer2.1 ||||
NeBuffer3.1 |
CutSmartBuffer ||||| ||||
OneTaqStandardReactionBuffer ||||
OneTagGCReactionBuffer |
OneTaqHighGCEnhancer |
Buffer f. T4 DNA Ligase+ATP ||||
Buffer f. T4 DNA Ligase |
Buffer f. T7 DNA Ligase |
TermoPolReactionBuffer |||||
ThermoPolBuffer ||
ATP20xStock (Ligation) |
5x HF Puffer |
Magnesiumchlorid
Weiß2 = Primer
Primer reverse |
Primer forward |
Primer mix |
Primer forward (Eurofins)
Controll Template
Controll Primer ||
p15a forward primer
LacZ PRimer forward |
NDE1 reverse |
Kpn1 forward |
dNTP-SolutionMix (10mM) ||
dNTP (2mM) |||||||||||||
Lamda-DNA |
Lamda DNA Hind3 digest |
Quick-(1kB) DNA Ladder |
100bp DNA Ladder |
Controll Template |||
Controll Primer |||
pUC192 |
pUC19 neu |
pEasy T1 Cloning Vector |
pYAC3 ||
pGreen20049 |
p355-GFP |
CUP2 Promotor||
SPO3 forward Primer |
Gene Ruler 100bp |
__Grün 3 = Polymerase/RNase__
TE + RNase |||||||||||
Taq Polymerase |||||
Phusion HF Dna Pol |
RNase-IF |
RNase||||
Instant Sticky Ends Ligase Master Mix |
T4 Dna Ligase |
T7 Dna Ligase |
Blunt Ligation Master Mix |
Taq Buffer
__Blau4__
5x Phusion GC Reaction Buffer |
Q5 Reaction Buffer ||
Q5 Hf Polymerase ||
1kb + DNA Ladder |
Eurofins Primer |
Phusion HF Reaction Buffer |
10mM dNTP Solution Mix |||
Q5 High GC Enhancer ||
OneTaq Dna Pol |
OneTaq HotStart Buffer |
10 kb controll Primer Mix |
100% DMSO |
Box 5 - blauer Deckel
Lamda DNA |
Buffer
Eurogenomics Primer
Primer
LycTerm
DNA Marker Quick Load |
Loading Buffer
100bP Dna Ladder
One Taq Standard Reaction Buffer|
__Metallblock mit Restriktionsenzyme__
Sp1 |
Bsa!-HF ||
Pst1 |
Kq/pn1 | ??
Xma1 |
BamH1 -HF|
Xba1 |
Sma1|
EcoR1-HF|
PNK |
Pst1 |
T4 Dna Ligase |||
Proteinase K |
T4 DNA Ligase + ATP ||
__Violette Box (to be used)__
Ribunuklease 100mg |
Iptg 1g |
HOT FIREPOL Blend Mastermix |
xß-gal |
Lyticase |
GFP
ATP 5 g
__Phusion High fidelity PCR Kit__
Phusion DNA Pol |
1.3 kB Primer |
GC Buffer|
DMSO |
10 kb Primer |
Magnesiumchlorid |
dNTP Mix |
DNA-Marker|
Lamda-DNA |
__E.coli Selection Kit__
versciedene Vektoren, Buffer, PCR-Controll, Restrictionsenzyme…
__STÄMME (lyophilisiert in Plastikröhrchen__
DSM430 |
DSM5997 |
__Eurofins Genomix Metall__
Primer ||||
__NAWI - iGem Plastik Hülsn__
G-Blocks Gen Fragmente |
Spezifisch-Flag-Tag |
__Transformation Efficiency Kit - Plasik Hülsn__
pSB1C3 50pg/ml - 0,5pg/ml)
__Linearisirte Plasmid Backbones - Plastik Hülsn__
pSB1 derivate 4x